کارایی استفاده از چوب مسواک در برابر دهانشویه کلرهگزیدین بر روی باکتری های گرم منفی دهانی در بیماران تحت تهویه مکانیکی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشکده پرستاری و مامایی، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران

2 مرکز تحقیقات پرستاری جامعه ، دانشکده پرستاری و مامایی ، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان ، ایران

3 گروه مشاوره، مرکز تحقیقات بهداشت بارداری، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران

4 متخصص بیهوشی، متخصص ICU، گروه بیهوشی و مراقبت های ویژه، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران

چکیده

مقدمه و هدف: ترکیب فلور میکروبی دهان و حلق بیماران بستری در بخش مراقبت های ویژه در عرض 48 ساعت پس از پذیرش به‌ راحتی از استرپتوکوک های گرم مثبت به پاتوژن های غالب گرم منفی تغییر پیدا می‌کند و این موضوع می تواند باعث افزایش بروز عفونت و مرگ بیماران شود. بنابراین، مطالعه حاضر با هدف ﺗﻌﻴﻴﻦ کارایی چوب مسواک در برابرکلرهگزیدین بر روی باکتری های گرم منفی دهان بیماران تحت تهویه مکانیکی اجرا شد.
مواد و روش ها: در این مطالعه کارآزمایی بالینی بیماران با نمونه گیری دردسترس انتخاب وبه روش تصادفی ساده در دو گروه قرار گرفتند. بیماران در گروه مداخله مراقبت از دهان با چوب مسواک ودر گروه کنترل با دهانشویه کلرهگزیدین دریافت کردند. ارزیابی وضعیت کلونی باکتری های گرم منفی دهان بیماران قبل از شروع مداخله و نهایتاً در پنجمین روز مطالعه با نمونه گیری از ترشحات دهان انجام واطلاعات بدست آمده با استفاده از آزمون آماری فیشر دقیق مورد مقایسه قرارگرفت.
نتایج: میانگین وانحراف معیار سن بیماران در دو گروه 13.6±34.2 سال بود که اختلاف معناداری نداشتند (72/0P=). بین دو گروه از نظر جنسیت تفاوت معنادار آماری وجود نداشت. (28/0 P=). به عنوان هدف اصلی، کلونی باکتری های گرم منفی دهانی قبل ازمداخله در دو گروه با یکدیگر اختلاف معنادار آماری نداشت (16/0 P=) ولی بعد ازمداخله، از نظر کلونی های باکتری های گرم منفی دوگروه با یکدیگر اختلاف معنادار آماری داشتند (0001/0 P<).
نتیجه‌گیری: چوب مسواک نسبت به کلرهگزیدین تاثیر بیشتری روی باکتری های گرم منفی دهانی داشته است.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Efficacy of salvadora presica (Miswak) against chlorhexidine mouthwash on oral Gram negative bacteria in mechanical ventilation patients

نویسندگان [English]

  • Haniye Irani 1
  • Zahra Pishkar mofrad 2
  • Ali Navidian 3
  • Alireza Rahat Dahmarde 4
1 Nursing and Midwifery College, Zahedan University of Medical Sciences, Zahedan, Iran
2 Community Nursing Research Center, Nursing and Midwifery College, Zahedan University of Medical Sciences, Zahedan, Iran
3 Department of Counseling, Pregnancy Health Research Center, Zahedan University of Medical Sciences, Zahedan, Iran
4 Anesthesiologist, Intensivist, Department of Anesthesiology and Critical care, Zahedan University of Medical Sciences, Zahedan, Iran
چکیده [English]

Background and Objective: The composition of the oral and pharyngeal microbial flora of patients admitted to the intensive care unit within 48 hours after admission easily changes from gram-positive streptococci to dominant gram-negative pathogens and this can increase the incidence of infection and death of patients. Therefore, the aim of this study was to evaluate the efficacy of salvadora presica (Miswak) against chlorhexidine on Gram-negative oral bacteria.
Materials and Methods: In this clinical trial study, patients were selected by available sampling and divided into two groups by simple random sampling. Patients in the intervention group received oral care with a Miswak and the control group received chlorhexidine mouthwash. Colony status of Gram-negative bacteria in patients' mouths before the intervention and finally on the fifth day of the study were evaluated by sampling oral secretions and the obtained information were compared using Fisher's exact test.
Results: The mean and standard deviation of age were 34.2±13.6 years which did not differ significantly (P=0.72). There was no statistically significant difference between the two groups regarding gender (P=0.28). As the main target, no significant difference was observed between the two groups before treatment (P=0.16). However, after treatment the two groups had a statistically significant difference in the Gram-negative bacteria colonies (P<0.0001).
Conclusion: Salvadora presica (Miswak) had more effect on oral bacteria than chlorhexidine.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Salvadora presica (Miswak)
  • Chlorhexidine
  • Oral bacteria

مراجع

  1. Diamanti-Kandarakis E, Kouli CR,  Bergiele AT, Filandra FA, Tsianateli  TC, Spina GG, et al. A survey of the polycystic ovary syndrome in the Greek island of Lesbons: hormonal and metabolic profile. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism 1999; 84:4006-11.
  2. Dabadghao P. Polycystic ovary syndrome in adolescents. Best Practice & Research Clinical Endocrinology & Metabolism 2019; 33(3):1-10.
  3. Dunaif A. Polycystic ovary syndrome in 2011: Genes, aging and sleep apnea in polycystic ovary syndrome. Nature Reviews Endocrinology 2011; 8(2):72-4.
  4. Barber TM, Hanson P, Weickert MO, Franks S. Obesity and Polycystic Ovary Syndrome: Implications for Pathogenesis and Novel Management Strategies. Clinical Medicine Insights: Reproductive Health 2019; 9(13):1-9.
  5. Susan K, Christopher R, Kristen, John C. Neuroendocrine Effects of Androgens in Adult Polycystic Ovary Syndrome and Female Puberty. Seminars in Reproductive Medicine 2007; 25(5):352-9.
  6. Mahmoudian A, Dehghan M, Jafarpour M. The effect of morphine administration on structure and ultrastructure of uterus in pregnant mice. Iranian Journal of Reproductive Medicine 2010; 8: 111-8.
  7. Trevor AJ, Masters SB, Katzung BG. Basic& Clinical pharmacology. 14thed. New York: McGraw-Hill Medical 2018.
  8. Lembo PM, Grazzini E, Groblewski T, O'Donnell D, Roy MO, Zhang J, et al. Proenkephalin A gene products activate a new family of sensory neuron-specific GPCRs. Nature Neuroscience 2002; 5(3):201-9.
  9. Hat GK, Mahesh VB, Ping L, Chorich L, Wiedmeier VT, Brann DW. Opioid-glutamate-nitric oxide connection in the regulation of luteinizing hormone secretion in the rat. Endocrinology 1998; 139(3):955-60.
  10. Abs R, Verhelst J, Maeyaert J, Van Buyten JP, Opsomer F, Adriaensen H, et al. Endocrine consequences of long-term intrathecal administration of opioids. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2000; 85:2215-22.
  11. Smith YR, Stohler CS, Nichols TE, Bueller JA, Koeppe RA, Zubieta JK. Pronociceptive and antinociceptive effects of estradiol through endogenous opioid neurotransmission in women. The Journal of Neuroscience 2006; 26(21):5777-85.
  12. Eyvazzadeh AD, Pennington KP, Pop-Busui R, Sowers M, Zubieta JK, Smith YR. The role of the endogenous opioid system in polycystic ovary syndrome. Fertility and Sterility 2009; 92 (1):1-12.
  13. Karami M, Darban Fooladi M, Jalali Nadoushan M, Lakzaei F. Ovarian Polycystic Induction with Morphine in Wistar Rat. Journal of Basic and Clinical Pathophysiology 2015; 3(1):1-6.
  14. Hassani F, Karami M, Jalali Nadoushan MR, Eftekhari Yazdi P. Nitric oxide-induced polycystic ovaries in the Wistar rat. International Journal of Fertility and Sterility 2012; 6(2):111-6.
  15. Karami M, Mohammadi M, Afraz S. Survey on the interaction effect of dopamine D2 receptor antagonist on morphine-induced polycystic ovary syndrome in rat. Daneshvar Medicine 2020; 28(3):16-27
  16. Lakoski JM, Gebhart GF. Attenulation of morphine’s depression of serum luteinizing hormone by lesions inthe amygdale. Neuroendocrinology 1981; 33:105-11.
  17. Sianati S, Sharif B, Sadeghi M, Kalbasi Anaraki D and Dehpour AR. Effects of female sex hormones on morphine dependence. Annals of General Psychiatry 2008; 7(1):264.
  18. Nabatchian F, Tashauoei M, Bahrami A. Evaluation of the Effects of Morphine on Sex Hormones in Wistar Rats. Journal of Laboratory & Diagnosis 2019; 11 (43):42-9.
  19. Tsilchorozidou T, Overton C, Conway GS. The pathophysiology of polycystic ovary syndrome. Clinical Endocrinology 2004; 60:1-17.
  20. Lim DK. Ketamine associated psychedelic effects and dependence. Singapore Medical Journal 2003; 44(1):31-4.
  21. Hashemnia M, Javedani M, Nikoosafat Z, Abdoli Jamoor S. Study of Hematological, Biochemical and Histopathological Changes Due to Long-Term Administration of Ketamine in Rat. Journal of Rafsanjan University of Medical Sciences 2018; 17(7):639-56.
  22. Chakraborty TR, Ng L, Gore AC. Colocalization and hormone regulation of estrogen receptor and N-methyl-D-aspartate receptor in the hypothalamus of female rats. Endocrinology 2003; 144:299-305.
  23. Reyes Toso CF, Linares LM, Rodríguez RR. Blood sugar concentrations during ketamine or pentobarbitone anesthesia in rats with or without alpha and beta adrenergic blockade. Medicina (B Aires) 1995; 55(4):311-6.
  24. Urkler C, Onat T, Yildirim E, Kaplan S, Yazici G, Mammadov R et al. Can the negative effects of ketamine abuse on female genital organs be prevented by nimesulide? An experimental study. General Physiology and Biophysics 2019; 38(5):427-34.
  25. Annetta MG, Iemma D, Garisto C, Tafani C, Proietti R. Ketamin: new indication for an old drug. Current Drug Targets 2005; 6(7):789-94.
  26. Canale TS. Campbell’s operative orthopedics. 9th ed. St. Louis: Mosby 1998.
  27. Kapfer B, Alfonsi P, Guignard B, Sessler DI, Chauvin M. Nefopam and ketamine comparably enhance postoperative analgesia. Anesthesia & Analgesia 2005; 100(1):169-74.
  28. Ottem EN, Godwin JG, Petersen SL. Glutamatergic signaling through the N -methyl-D-aspartate receptor directly activates medial subpopulations of luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) neurons, but does not appear to mediate the effects of estradiol on LHRH gene expression. Endocrinology 2002; 143:4837-45.
  29. Peltoniemi MA, Hagelberg NM, Olkkola KT, Saari TI. Ketamine: A Review of Clinical Pharmacokinetics and Pharmacodynamics in Anesthesia and Pain Therapy. Clinical Pharmacokinetics 2016; 55(9):1059-77.
  30. Yang SS, Jang MY, Lee KH, Hsu WT, Chen YC, Chen WS, et al. Sexual and bladder dysfunction in male ketamine abusers: A large-scale questionnaire study. PLoS One 2018; 13(11):1-10.
دانشور پزشکی
دوره 29، شماره 4 - شماره پیاپی 155
مهر و آبان 1400
صفحه 22-32

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار