اثر محافظتی گرلین بر تغییرات هیستوپاتولوژیکی بافت کلیه موش‌های تحت تیمار با سیکلوفسفامید

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، اردبیل، ایران

2 کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، اردبیل، ایران

3 گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

4 گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مراغه، مراغه، ایران

5 گروه علوم تشریحی و پاتولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، اردبیل، ایران

چکیده

مقدمه و هدف: سیکلوفسفامید یکی از داروهای رایج در شیمی­درمانی و سرکوب سیستم ایمنی در پیوند ارگان­ها می­باشد. کاربرد کلینیکی سیکلوفسفامید به دلیل عوارض جانبی زیادی که در اثر سمیت تولید­مثلی، کبدی، کلیوی و قلبی در بیماران و مدل­های حیوانی دارد، کمتر شده است. هدف این مطالعه بررسی اثر گرلین در برابر آسیب­های ناشی از سیکلوفسفامید در بافت کلیه می­باشد.
مواد و روش ها: 32 سر موش سوری نر 2 ماهه به طور تصادفی به 4 گروه 1- کنترل 2-سیکلوفسفامید 3- سیکلوفسفامید + گرلین 4- گرلین تقسیم شدند. سیکلوفسفامید هفته­ای یک بار (100 میلی گرم بر کیلوگرم) و گرلین (80 میکروگرم بر کیلوگرم) روزانه به مدت 5 هفته به صورت داخل صفاقی تزریق شدند. پس از 5 هفته کلیه­ها خارج شده و پس از توزین تغییرات بافتی توسط رنگ آمیزی­های هماتوکسیلین- ائوزین و پریودیک اسید شیف مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: بررسی­ها نشان داد که سیکلوفسفامید باعث کاهش معنادار وزن بدن و کلیه شده و همچنین سبب افزایش معنادار آسیب بافتی می­شود (05/0>p). درمان با گرلین به طور معناداری باعث بهبودی در فاکتورهای فوق گردید (05/0>p).
نتیجه‌گیری: نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که گرلین می­تواند اثرات تخریبی ناشی از سیکلوفسفامید در بافت کلیه را کاهش دهد.

کلیدواژه‌ها

مراجع

  1. Aladaileh SH, Al-Swailmi FK, Abukhalil MH, Shalayel MH. Renoprotective Effect of Formononetin against Cyclophosphamide-Induced Oxidative Stress and Inflammation in Rat Kidney. Journal of Pharmaceutical Research International 2021; 33(2):26-37. doi: 10.9734/jpri/2021/v33i231144
  2. Lin X, Yang F, Huang J, Jiang S, Tang Y, Li J. Ameliorate effect of pyrroloquinoline quinone against cyclophosphamide-induced nephrotoxicity by activating the Nrf2 pathway and inhibiting the NLRP3 pathway. Life Sciences. 2020; 256:117901. doi: 10.1016/j.lfs.2020.117901.
  3. Samar O. Acute Taxol nephrotoxicity: Histological and ultrastructural studies of mice kidney parenchyma. Saudi Journal of Biological Science 2010; 17(2):105-14. doi: 10.1016/j.sjbs.2010.02.003.
  4. Lin X, Yang F, Huang J, Jiang S, Tang Y, Li J. Ameliorate effect of pyrroloquinoline quinone against cyclophosphamide-induced nephrotoxicity by activating the Nrf2 pathway and inhibiting the NLRP3 pathway. Life Sciences 2020; 256:117901. doi: 10.1016/j.lfs.2020.117901.
  5. Rehman MU, Tahir M, Ali F, Qamar W, Lateef A, Khan R, et al. Cyclophosphamide-induced nephrotoxicity, genotoxicity, and damage in kidney genomic DNA of Swiss albino mice: the protective effect of Ellagic acid. Molecular and Cellular Biochemistry 2012; 365(1-2):119-27. doi: 10.1007/s11010-012-1250-x.
  6. Salimnejad R, Soleimani Rad J, Mohammad Nejad D, Roshangar L. Effect of ghrelin on total antioxidant capacity, lipid peroxidation, sperm parameters and fertility in mice against oxidative damage caused by cyclophosphamide. Andrologia 2018; 50(2). doi: 10.1111/and.12883.
  7. Venables G, Hunne B, Bron R, Cho H-J, Brock JA, Furness JB. Ghrelin receptors are expressed by distal tubules of the mouse kidney. Cell and Tissue Research 2011; 346(1):135-9. doi: 10.1007/s00441-011-1240-4.
  8. Fujimura K, Wakino S, Minakuchi H, Hasegawa K, Hosoya K, Komatsu M, et al. Ghrelin protects against renal damages induced by angiotensin-II via an antioxidative stress mechanism in mice. PLoS One 2014; 9(4):e94373. doi: 10.1371/journal.pone.0094373. eCollection 2014.
  9. Mori K, Yoshimoto A, Takaya K, Hosoda K, Ariyasu H, Yahata K, et al. Kidney produces a novel acylated peptide, ghrelin. FEBS letters 2000; 486(3):213-6. doi: 10.1016/s0014-5793(00)02308-5.
  10. Kacar AK, Sacan O, Ozicli N, Bolkent S, Yanardag R, Bolkent S. The Effects of Ghrelin on Renal Complications in Newborn Diabetic Rats. European Journal of Biology 2020;79(1):1-6. doi:10.26650/ EurJBiol.2020.0043.
  11. Wang W, Bansal S, Falk S, Ljubanovic D, Schrier R. Ghrelin protects mice against endotoxemia-induced acute kidney injury. American Journal of Physiology 2009; 297(4):F1032-7. doi: 10.1152/ajprenal.00044.2009.
  12. Zhang W, Shu L. Upregulation of miR-21 by ghrelin ameliorates ischemia/ reperfusion-induced acute kidney injury by inhibiting inflammation and cell apoptosis. DNA and cell Biology 2016; 35(8):417-25. doi: 10.1089/dna.2016.3231.
  13. Lu W-P, Mei X-T, Wang Y, Zheng Y-P, Xue Y-F, Xu D-H. Zn (II)–curcumin protects against oxidative stress, deleterious changes in sperm parameters and histological alterations in a male mouse model of cyclophosphamide-induced reproductive damage. Environmental Toxicology and Pharmacology 2015; 39 (2) :515-24. doi: 10.1016/j.etap. 2014.12.014.
  14. Obay BD, Taşdemir E, Tümer C, Bilgin HM, Atmaca M. Dose dependent effects of ghrelin on pentylenetetrazole-induced oxidative stress in a rat seizure model. Peptides 2008; 29(3):448-55. doi: 10.1016/j.peptides.2007.11.020
  15. Eyvazi M, Tayefi H, Abedelahi A, Salimnejad R, Majdi A. Effect of Vitamin E and Sodium Selenite on the Expression of Bax and Bcl2 Genes and Renal Histopathology in the Electromagnetic Field-Exposed Mice. Crescent Journal of Medical and Biological Sciences 2019; 6(4): 523–528.
  16. Mazani M, Rezagholizadeh L, Shamsi S, Mahdavifard S, Ojarudi M, Salimnejad R, et al. Protection of CCl4-induced hepatic and renal damage by linalool. Drug and Chemical Toxicology 2020: 1-9. doi: 10.1080/01480545.2020.1792487.
  17. Lopez SG, Luderer U. Effects of cyclophosphamide and buthionine sulfoximine on ovarian glutathione and apoptosis. Free Radical Biology and Medicine 2004; 36(11):1366-77. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2004.02.067.
  18. Aguilar-Mahecha A, Hales BF, Robaire B. Chronic cyclophosphamide treatment alters the expression of stress response genes in rat male germ cells. Biology of Reproduction 2002; 66(4):1024-32. doi: 10.1095/biolreprod66.4.1024.

 

  1. Gunes S, Sahinturk V, Uslu S, Ayhanci A, Kacar S, Uyar R. Protective effects of selenium on cyclophosphamide-induced oxidative stress and kidney injury. Biological Trace Element Research 2018; 185(1):116-123. doi: 10.1007/s12011-017-1231-8.
  2. Cuce G, Esen HH, Koc T, Canbaz HT, Limandal C, Kalkan S, et al. Vitamin E partially ameliorates cyclophosphamide-induced nephrotoxicity in rats. Progress in Nutrition 2016;18(2):140-145.
  3. Hazrati A, Salimnejad R, Alipour M, Mirzaei Bavil F, Alihemmati A. Protective effect of ghrelin on testicular damages caused by chronic hypoxia in rats: a histopathological study. Andrologia 2018;50(4):e12989. doi: 10.1111/and . 12989.
  4. Salama ME, Adel M, Helal G, El-Shafey M. Role of Oxidative Stress, Apoptosis and Autophagy in Cadmium-induced Renal Injury in Rats: Renoprotective Effect of Ghrelin. Bulletin of Egyptian Society for Physiological Sciences 2019;39(2):271-285. doi: 10.21608/BESPS. 2019. 14414. 1025
  5. Shati AA, El‐Kott AF. Acylated ghrelin protects against Doxorubicin‐induced nephropathy by activating SIRT1. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology 2021; 128(6):805-821. doi: 10.1111/bcpt.13569.
دانشور پزشکی
دوره 29، شماره 2 - شماره پیاپی 153
خرداد و تیر 1400
صفحه 1-11

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار